Este artículo está basado en un artículo de investigación [enlace]. El ‘iSperm’ mencionado en el artículo es el iSperm mCASA. Realiza tu programa de cría rápidamente con el iSperm. Consulta https://www.isperm.co/es/ o Contáctanos para más detalles.
Introducción
Debido a la escasez de rinocerontes y las altas tasas de caza furtiva, las instituciones zoológicas y la conservación de la vida silvestre necesitan aumentar las poblaciones de rinocerontes mediante la Inseminación Artificial (IA) en conservación ex-situ. Preservar la diversidad genética mediante el banco de material biológico como el esperma es esencial durante la operación de IA y el mantenimiento del ecosistema silvestre.
La calidad de las muestras de semen debe ser consistente, ya que se realizan intercambios de muestras entre instituciones y se rastrean los cambios en la fertilidad de las especies en peligro. La concentración, que es el número de espermatozoides en una muestra, y la motilidad, conocida como la proporción de espermatozoides en movimiento, son cruciales para determinar la tasa de éxito de fertilización.
¿Cómo se realiza la evaluación del semen?
En esta investigación, se realizaron evaluaciones de semen con muestras frescas y criopreservadas recolectadas de Rinoceronte Negro (Diceros bicornis), Rinoceronte Blanco (Ceratotherium simum) y Rinoceronte de Un Cuerno (Rhinoceros unicornis) con la aprobación del Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales del Zoológico y Jardín Botánico de Cincinnati por las instituciones zoológicas.
Los parámetros de la aplicación de software del iSperm se ajustaron para determinar la calidad de la muestra de semen. Se consideraron motiles a los espermatozoides con una velocidad media de trayectoria (VAP) > 5 µm/s. Y aquellos con una velocidad en línea recta (VSL) > 25 µm/s y rectitud del movimiento del esperma (calculada como VSL/VAP) > 75% se consideraron espermatozoides progresivamente motiles.
Luego, se realizaron evaluaciones manuales con un hemocitómetro en una alícuota separada para validar el análisis del iSperm. Para determinar la precisión de la identificación de células de esperma por el iSperm y la concordancia entre las evaluaciones de concentración, se realizaron análisis de correlación de Pearson (valor P ≤ 0.05 es significativo) y análisis Bland-Altman (una relación = 1 indica acuerdo completo).
¿Es el iSperm confiable y se puede estandarizar para la evaluación de esperma?
Se demostró que el análisis realizado por el iSperm tenía una correlación significativa con la evaluación manual del esperma con r = 0.9908, P < 0.0001 como se muestra en la Fig. 1A. Y el sesgo (relación media) entre el iSperm y el observador fue de 0.97 en la Fig. 1C, que estaba cerca de un acuerdo completo. Las muestras de semen diluidas con diferentes diluyentes, por ejemplo, formulaciones a base de huevo y leche, aún fueron evaluadas con precisión por el sistema iSperm.
Los valores derivados del iSperm estuvieron notablemente en acuerdo con los valores obtenidos usando un hemocitómetro con r = 0.9847, P < 0.0001 en la Fig. 1B. En conjunto con un sesgo de 1.03 (relación media) como se muestra en la Fig. 1D, que muestra la correlación entre el conteo del iSperm y el conteo del hemocitómetro.
Fig.1
Se obtuvieron excelentes confiabilidades de la concentración y la motilidad total del iSperm ya que el Coeficiente de Correlación Intraclase (ICC) es superior a 0.96, como se muestra en la Tabla 1.
Tabla 1
¿Qué ofrece el iSperm para la evaluación de la calidad del esperma?
En resumen, este estudio ha demostrado la efectividad y fiabilidad del iSperm mCASA para evaluar la calidad del esperma de rinoceronte. A través de una evaluación rigurosa de muestras frescas y criopreservadas de múltiples especies de rinocerontes, hemos establecido una correlación significativa entre el análisis del iSperm y la observación manual de la calidad del esperma. La precisión del iSperm, indicada por el acuerdo cercano en los resultados y el alto Coeficiente de Correlación Intraclase (ICC), muestra su potencial como una herramienta valiosa para la conservación ex-situ.
Con su portabilidad y interfaz basada en tabletas, el iSperm ofrece un medio conveniente de evaluación en entornos de laboratorio y una solución práctica para el trabajo de campo. Esta capacidad para rastrear y analizar rápidamente células de esperma en movimiento, particularmente aquellas que muestran motilidad progresiva, mejora la precisión, compatibilidad y repetibilidad de las evaluaciones.
Este artículo es presentado por iSperm mCASA, un analizador de semen móvil/mini asistido por computadora con alta precisión y asequibilidad para su uso en cualquier momento y lugar por cualquier persona. Consulta https://www.isperm.co/es/ o Contáctanospara saber cómo el iSperm puede asistir en tu programa de cría.
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Citation:
- Rispoli, L.A. and Roth, T.L. (2023). Validation of the iSperm for assessing rhinoceros Sperm. Theriogenology Wild, 3. https://doi.org/10.1016/j.therwi.2023.100048.
- Rhino Calf Horns mother and - free photo on Pixabay - Pixabay. (n.d.). https://pixabay.com/photos/rhino-calf-horns-mother-and-child-6065480/